Острые и хронические эксперименты в ихтиотоксикологии презентация

Содержание

РЫБА КАК ТЕСТ-ОБЪЕКТ Условия постановки экспериментов с рыбами Подопытные рыбы и критерии их отбора Наблюдения в естественных условиях Лабораторные эксперименты Острые опыты Скрининг

Слайд 14 Лекция
Острые и хронические эксперименты в ихтиотоксикологии

Слайд 2 РЫБА КАК ТЕСТ-ОБЪЕКТ Условия постановки экспериментов с рыбами Подопытные рыбы и критерии их

отбора Наблюдения в естественных условиях Лабораторные эксперименты Острые опыты Скрининг Определение времени наступления гибели Изучение сублетальных эффектов и обратимости действия токсикантов Изучение влияния условий среды на токсичность вещества Обсчет экспериментальных данных для получения величин полулетальных концентраций (ЛК50) Определение максимально допустимых концентраций (МДК), или предельно допустимых концентраций (ПДК) Определение минимальной летальной дозы вещества Определение действия токсиканта в корме Определение внешних симптомов токсикации

Слайд 3ТОКСИКОМЕТРИЯ – совокупность методов и приемов исследований для количественной оценки токсичности

и опасности ядов.

Параметры токсикометрии

Первичные (экспериментальные)

Производные (вторичные)

Слайд 4Экспериментальные (первичные) параметры токсикометрии

Слайд 5CL50 – концентрация средняя смертельная:

вызывает гибель 50 % подопытных животных (мыши,

крысы, рыбы) при ингаляционном воздействии в течение соответственно 2 и 4 ч и последующем 14-дневном сроке наблюдения (мг/м3, мг/л).

DL50 – доза средняя смертельная:

вызывает гибель 50 % подопытных животных при однократном введении в желудок, брюшную полость с последующим 14-дневным сроком наблю дения (мг/кг).

Слайд 6DL0 (CL0) – доза (концентрация) максимально переносимая:
наибольшее количество вредного вещества,

введение которого в организм не вызывает гибели животных

DL100 (CL100) – доза (концентрация) абсолютно смертельная:
наименьшее количество вредного вещества, вызывающее гибель 100 % подопытных животных.

Слайд 7Limac int – порог острого интегрального действия: минимальная доза (концентрация), вызывающая

изменения биологических показателей на уровне целостного организма, которые выходят за пределы приспособительных физиологических реакций.

Lim ac sp – порог острого избирательного (специфического) действия:
минимальная доза (концентрация), вызывающая изменения биологических функций отдельных органов и систем организма, которые выходят за пределы приспособительных физиологических реакций.

Слайд 8Lim ch int – порог общетоксического хронического действия:
– минимальная доза (концентрация)

вещства, при воздействии которой в течение 4 ч по пять раз в неделю на протяжении не менее 4 месяцев возникают изменения, выходящие за пределы физиологических приспособительных реакций, или скрытая (временно компенсированная) патология.

Lim ch sp – порог отдаленных эффектов:
минимальная доза (концентрация) вещества, вызывающая изменения биологических функций отдельных органов и систем организма, которые выходят за пределы приспособительных физиологических реак-ций в условиях хронического воздействия.

Слайд 9Степень токсичности – величина, обратная средней смертельной дозе (концентрации).

Слайд 10вторичные
(производные)
параметры
токсикометрии

Слайд 11Полученные в острых опытах параметры токсичности (CL­50 (средняя смертельная концентрация), Lim

ac inf (порог острого интегрального действия), Lim zcsp (порог острого интегрального действия в зоне хронического действия)) позволяют рассчитывать зоны острого, хронического и специфического действия, которые дают возможность оценить опасность вещества.


Опасность оценивается двумя группами количественных показателей:
- критерием потенциальной опасности;
- критерием реальной опасности.

Слайд 12Потенциальная опасность определяется коэффициентом возможного ингаляционного отравления:
КВИО = С20/СL50 ,


где С20 – насыщенная концентрация вредных веществ в воздухе при Т = 20 град. С, мг/м3.
Чем выше насыщенная концентрация вещества при комнатной температуре и ниже средняя смертельная концентрация (знач. КВИО больше), тем вероятнее возможность развития острого отравления.
Анализ оценки опасностей различных промышленных ядов по величине КВИО показывает, что в ряде случаев малотоксичное, но высоколетучее вещество в условиях производства может оказаться более опасным в плане развития острого отравления, чем высокотоксичное, но малолетучее соединение.

Слайд 13О реальной опасности развития острого отравления можно судить по величине зоны

острого действия.
Зона острого действия (Zас) – это отношение средней смертельной концентрации CL50 к пороговой концентрации Limac при однократном воздействии:
Zас = CL50 / Limac.
Она является показателем компенсаторных свойств организма, его способности к обезвреживанию и выведению из организма ядов и компенсации поврежденных функций.
Чем меньше Zac, тем больше опасность острого отравления.

Слайд 14Показателями реальной опасности развития хронической интоксикации являются значения зон хронического и

биологического действия.
Зона хронического действия (Zch) – отношение пороговой концентрации при однократном воздействии Limac к пороговой концентрации при хроническом воздействии Limch: Zch = Limac / Limch.
Величина Zch используется для характеристики опасности яда при хроническом воздействии. Опасность хронического отравления прямо пропорциональна величине Zch. Зона хронического действия является показателем компенсаторных свойств организма на низкомолекулярном уровне.
Зона биологического действия (Zbiol) – соотношение средней смертной концентрации CL50 к пороговой концентрации при хроническом воздействии Limch:
Zbiol = CL50 / Limch.
Чем больше значение Zbiol , тем выраженнее способность соединения к кумуляции в организме.

Слайд 15Методики определения токсичности:

ускоренный метод;
экспериментальный метод.

Scenedesmus quadricauda
Chlorella vulgaris

Слайд 16В англоязычной литературе Zebrafish или zebra danio (рыбка-зебра), издавна использовались учеными

как очень удобный модельный объект.
Скрининг токсичности проводят с использованием как самих рыбок данио рерио так и их эмбрионов.
Можно сказать, что данио рерио – это рыбий аналог лабораторной белой мыши.

Слайд 17Практические использование развития Zebrafish
Быстрое развитие
Прозрачный эмбрион
Гомология развития
Легко манипулировать геномом
Недорогое обслуживание
Сотни эмбрионов
Продолжительность

эксперимента: 6 дней

Из Airhart et al (2007)

Предоставлено J. Olin, A. Tennant и K. Jensen

Слайд 18ToxCast_320 Химические вещества
309 химических веществ: в основном пестициды и пестицидные метаболиты


Внутри- и межпластинчатые дубликаты и тройные
Многие химические вещества прошли испытания у млекопитающих, включая контрольные тесты на токсичность развития у крыс и / или кроликов.
(База данных ToxRef, http: //www.epa.gov/ncct/toxrefdb)

Слайд 20Нормальная личинка
Патология в развитии
6 дней после оплодотворения
6-8 часов после оплодотворения

Слайд 21Пример кривых доза-реакция

Слайд 22Согласование между репликами

Слайд 23Согласование с предыдущими данными
Сравнение настоящих данных с данными о токсичности эмбрионов

рыбок данио в базе данных ECOTOX, а также недавно опубликованные данные о токсичности триазольных производных Hermsen, SA et al, 2011) химические вещества, которые были положительными в базе данных ECOTOX и в настоящем исследовании;
Xимические вещества, которые были положительными в базе данных ECOTOX, но отрицательные в настоящем анализе;
Tриазольные производные, проверенные в вышеуказанных публикациях.
Линия корреляции (пунктирная линия) соответствует положительным химическим веществам, что приводит к наклону 1.07 и R2 = 0.79.

Слайд 24Проявление изменений
Площадь
P2A
LWR
Расстояние хвоста хвоста
Длина позвоночника
Ширина
прямолинейность
выпуклость
искривление

Слайд 25Ученые планировали сделать из флуоресцирующих рыб индикаторы. По задумке проф. Гонга

они должны были начинать светиться в присутствии веществ-загрязнителей воды.

Кроме генетически модифицированных данио рерио, медаки, атлантического лосося разводят также ГМ карпов, ГМ форель, ГМ тиляпию, ГМ канальных сомиков, ГМ золотых рыбок.   

Слайд 26Трансгенные данио рерио, полученные профессором Гонгом для научных исследований

 Профессор Гонг

вводил в геном данио рерио различные конструкции. В частности, он соединял "миозиновый" промотор с GFP-геном. В этом случае GFP синтезировался в мышечной ткани и вырастали зеленые рыбы.  Первоначально эти трансгенные рыбы использовались для исследований по эмбриологии. В частности, выяснялась последовательность развития в онтогенезе различных мышц.

Слайд 27Таким образом, в геном GloFish введены сразу два трансгена. Однако взрослые

рыбы выглядят просто красными, поскольку в тонком слое эпидермиса не может накопиться GFP в количестве достаточном для того, чтобы его можно было увидеть невооруженным глазом. При специальном освещении и при использовании светофильтров можно обнаружить, что экспрессия GFP-гена продолжается и у взрослой генетически модифицированной рыбки. Мышцы, где идет синтез RFP, имеют значительный объем и в них накапливается много флуоресцентного белка, определяющего окраску рыбы. С возрастом цвет и флуоресценция усиливаются

Слайд 28Аналогичные попытки использовать трансгенных светящихся данио рерио в качестве тест-организмов предпринимались

сразу в нескольких лабораториях.
Были, например, созданы рыбки, которые действительно начинают излучать свет в присутствии некоторых опасных загрязнителей питьевой воды, таких как полихлорированные бифенилы (это сильные канцерогены).
В геном этих рыб были встроены гены светлячка связанные с промотором, который активизирует их работу тогда, когда рыбы испытывают стрессовое состояние.
Разработку даже планировали внедрить в реальную практику контроля водопроводной воды в графстве Клермонт штат Цинциннати (США). (Источник: архив National Institute of Environmental Health Sciences). Дело опять же окончилось ничем.

Слайд 29Работы по созданию быстрорастущего лосося
Предполагалась, что лососи и форели, улучшенные

с помощью методов генной инженерии, найдут народно-хозяйственное применение. Но выход на рынок генетически модифицированных промысловых рыб был надежно закрыт.     Однако американская фирма Aqua Bounty полна решимости не только преодолеть все бюрократические барьеры, но добиться благосклонного отношения общественности к своему продукту – AquaAdvantage® Salmon – очень быстро растущему атлантическому лососю (Salmo salar), в геном которого "вставлены" гены другого лосося – чавычи и морской холодноводной рыбы бельдюги.
Генетически модифицированные лососи растут гораздо быстрее не модифицированных рыб своего вида, что позволило бы снизить стоимость лососины в магазинах по крайней мере на 30%.

Слайд 30Молодь атлантического лосося. Все рыбки одного возраста. Легко узнать трансгенную
Сравнение

скорости роста генетически модифицированных и обыкновенных лососей.
CHEMTECH , 30(6), 17-28, 1999.

Слайд 31Целевые плазмиды с элементами ответа были сконструированы для управления экспрессией различных

флуоресцентных репортерных белков.
Плазмиды инъецировали в эмбрионы рыбок данио.
После скрининга положительных трансгенных рыбок данио в потомстве стабильно трансгенный рыбок данио может подвергаться воздействию различных загрязнителей окружающей среды и используется для мониторинга водной опасности, наблюдая флуоресценцию.
RFP - флуоресцентный белок;
GFP - зеленый флуоресцентный белок;
YFP - желтый флуоресцентный белок; Флюоресцентный белок CFP.

Слайд 32Работа с трансгенными рыбами в лабораториях корпорации Тайконг – крупнейшего производителя

флуоресцирующих аквариумных рыб.

Слайд 34Эмбрионы Данио быстро развиваются и долгое время остаются почти прозрачными.
Bзрослые рыбы

с ослабленной пигментацией в немалой степени сохраняют это свойство.
Поэтому, если организм трансгенной рыбы приобретёт способность производить флуоресцентный белок, то свечение легко будет наблюдать даже в том случае, когда экспрессия встроенного в её геном гена будет происходить в тканях, расположенных под кожей и во внутренних органах. Сходными свойствами обладает и японская рисовая рыбка – медака (Orizias latipes).
Тайваньские и японские исследователи получили флуоресцирующих и медак, и данио.

Трансгенные данио-рерио под флуоресцентным микроскопом.
При освещении синим светом они светятся зеленым благодаря присутствию в эпидермальных клетках GFP

Слайд 35Одна и та же пятидневная личинка, сфотографированная при освещении белым светом

(1),
синим светом (2) для выявления места экспрессии GFP-гена (кожа) и
зеленым светом (3) для выявления места экспрессии RFP-гена (мышцы спины).

Слайд 36Описание эксперимента
Рыбы: Данио рерио (розовые, флуоресцентные)
Начало эксперимента: 08.10.15 внутримышечно капсулы с

SNAF/Dextran (9500-95000 шт. на рыбу)
+ 14.10.15 внутримышечно капсулы Fluorescein/BSA (2250*106 шт. на рыбу)
Окончание эксперимента: 23.10.15
Фиксация: формалин 10%, рН 7.5
Толщина срезов: 7 мкм
Окраска: гематоксилин-эозин

Конфокальная микроскопия «лица» малька данио рерио

Слайд 37При осмотре полученных срезов через флуоресцентный микроскоп обращает на себя внимание

то, что практически все ткани рыб имеют очень яркую флуоресценцию, с четко выраженной внутриклеточной локализацией красителя. Особенно яркой флуоресценцией обладают эритроциты, содержимое ооцитов и гранулы в гепатоцитах.

Флуоресценция на срезах тканей (Ex. 484-504, Em. 517-537 nm).

почка

Капилляры
с эритроцитами

Слайд 38х10
Почка
Мышцы
Эритроциты
Почечные
канальцы

Слайд 39Пилорические
клетки
Эпителий ламелл
Капилляры
ламелл
Сосуды
Жаберные
ламеллы
Эритроциты
Жабры

Слайд 40Почка
Почечные
канальцы
эритроциты

Слайд 41Почка
Окрашенные
канальцы
Неокрашенные
канальцы

Слайд 42Мозг

Слайд 43Кишечник

Слайд 44Ооциты
Оболочка
ооцита
Разрыв оболочки и
выход содержимого
Гранулы

Слайд 45Объектов по размеру и форме похожих на капсулы (UFO) на гистологических

срезах не обнаруживается, или они единичны

Слайд 46Мышцы (слева) и препарат капсул (справа) при одинаковом увеличении
UFO
Мышцы

Слайд 47UFO
Мышцы
Эритроцит
Мышцы (сверху) и препарат капсул (снизу) при одинаковом увеличении

Слайд 48В печени рыб обнаруживается множественное точечное свечение.
Исходя из того, что «точки»,

похоже, локализованы внутри клеток паренхимы печени и по размеру меньше капсул, это, видимо, включения в цитоплазме гепатоцитов.

Слайд 49х60
х40
Печень
Сосуд
Паренхима
Гранулы

Слайд 50Печень (слева, центр) и препарат капсул (справа) при одинаковом увеличении
Печеночный проток
паренхима

Слайд 511. На гистологических срезах через 7 дней после введения капсул с

флуоресциином самих капсул не обнаруживается (кроме единичных случаев, которые могут быть артефактами).
2. Цитоплазма клеток, особенно эритроцитов, а также включения в гепатоцитах и ооцитах демонстрируют сильную флуоресценцию с эмиссией около 530 нм.

Слайд 52Капсулы могут теряться при нарезке тканей и депарафинизации, а могут быть

полностью разрушены в организме.
Эозин обладает мощной флуоресценцией в том же диапазоне длин волн что и флуоресцеин, что также затрудняет поиск капсул с флуоресцеином
Необходимо делать препараты каждой партии капсул (иммобилизованные под стеклом) для контроля

Выводы:

Слайд 56Потенциал микробиологического загрязнения
Q = 4q /d,
 
где Q – потенциал

бактериального загрязнения, КОЕ/м3;
q – бактериальная плотность КОЕ/м2;
d – диаметр трубопровода, м.

Слайд 57При одной и той же концентрации выраженность и исход токсического процесса

меняются в зависимости от времени действия яда на организм:
определение величины летальной или пороговой концентрации экспозиция, т. е. время контакта рыбы с ядом, длится до появления признака (смерть или другая патологическая реакция)
Различают:
кратковременные загрязнения, продолжительностью 1-2 ч (кратковременный контакт рыб с ядом).
более длительные (несколько часов, дней, недель и т. д.)
фактор времени приобретает особое значение при определении пороговых и предельно допустимых концентраций токсического агента.
В опытах на уклейке с углекислым аммонием, 24 ч наблюдения, выявили летальную концентрацию, равную 50 мг/л, по азоту [(NН4)2СО3].
Увеличение времени контакта рыб с ядом до 15 дней приводило к гибели рыб при концентрации яда в 2 раза меньшей - 24 мг/л.

Слайд 58В опытах с ураном, торием и стронцием по данным М. М.

Телитченко, длительное действие небольших концентраций этих радионуклидов на дафний (Daphnia magna) приводило к гибели или уменьшению потомства и задержке полового созревания.
Увеличение продолжительности опытов с 20- 40 до 400 дней позволило выявить повреждающее действие урана на уклеек (дегенерация яичников) даже при концентрации 1 мг-ионов/л (эта концентрация в 50-100 раз меньше, чем вызывающая гибель рыб в течение нескольких недель).

Слайд 59Отмирание личинок лосося при развитии в чистой воде и в воде,

содержащей нелетучие фенолы:
а - температура воды в реке;
б и в - экспериментальные данные:
1 - контроль, развитие в чистой воде;
2 - развитие в воде из р. Наровы;
3 - в воде, содержащей нелетучие фенолы в концентрации 3 мг/л;
4 - то же, с концентрацией 6 мг/л;
5 - в разбавленной (1 : 1) воде из р. Плюсса, начало опыта 9/V;
6 - то же, начало опыта 17/V;
7 - в неразбавленной воде из р. Плюсса;
8 - в воде, содержащей нелетучие фенолы в концентрации 12 мг/л;
9 - то же, при концентрации 15 мг/л;
10 - то же, при 50 мг/л (по Вернидуб, 1962).
 

Слайд 60В опытах на сеголетках (140 особей) и взрослых карасях было установлено,

что при температуре 13-15°С, кислородном насыщении 5-6,5 мг/л, рН 7,3-7,6, жесткости 9,2-10,6° за 96 ч наблюдений концентрация фенола 25 мг/л приводила к развитию лишь некоторых симптомов фенольной интоксикации без летального исхода.

Слайд 61Увеличение продолжительности опытов до 10 суток при этой же концентрации яда

вызвало гибель всех испытуемых рыб.
Анализ показывает, что по мере увеличения времени контакта рыб с ядом нарастает сила летального эффекта, проявляющаяся в постепенном увеличении процента гибели испытуемых рыб.
Первыми гибнут наименее устойчивые особи.
По мере увеличения контакта рыб с ядом нарастает токсический процесс у более выносливых рыб.

Слайд 62В качестве показателя токсичности того или иного соединения и уровня устойчивости

рыб используют время их выживания в токсическом растворе.
В ряде работ используют и другие критерии токсичности:
1) время погружения, необходимое для начала токсического процесса;
2) время развития токсического процесса до некоторого хорошо заметного уровня (время опрокидывания);
3) минимальное время экспозиции для наступления токсического процесса (летальное время).

Слайд 63Первый критерий - время погружения - весьма близок по своему содержанию

к понятию «латентный период», т. е. промежутку времени между началом контакта рыбы с ядом и первыми признаками отравления.
Второй критерий определяет время наступления одного из наиболее показательных признаков отравления, потерю рефлекса равновесия, т. е. «время опрокидывания», именуемое также «временем проявления» (manifestation time).
Третий критерий - «летальное время» определяется на основе измерения времени экспозиции, приводящего к развитию полностью или частично необратимого отравления (важно при изучении спорадических загрязнений водоема).
Четвертый критерий - «время выживания» (survival time) время, необходимое для развития смертельного отравления.

Время гибели является одним из наиболее полноценных критериев токсичности различных веществ и динамики изменения токсичности в зависимости от концентрации вещества в опытах с острым отравлением.

Слайд 64Если по оси ординат откладывать процент гибели рыб, а по оси

абсцисс промежутки времени, в течение которого наступает летальный эффект, то получается кривая зависимости между временем и процентом погибших животных, которая получила название кривой «время-действие» (time-action).
Часто она имеет S-образную форму (как и кривая «концентрация-действие»), (рис.).

время

Процент гибели рыб

Динамика гибели карасей в растворе фенола 100 мг/л
 

Слайд 65Время гибели при неизменной концентрации яда дает широко рассеянный вариационный ряд.

Распределение частот в таком ряду хотя и приближается к нормальному, однако нередко существенно отклоняется от него.

Кривые бывают и другой формы (рис.).


Динамика гибели сегодлеток карася в растворе фенола 50 мг/л

Динамика гибели карасей в растворе фенола 200 мг/л 

Слайд 66Имеется несколько методов (Bliss, 1935; Litchfild, 1949), которые могут быть применены

для исследования выпрямленных прямых и определения среднего летального времени (LT50), а также стандартной ошибки этого показателя.
Обычно на графике находят точки, соответствующие LT16, LT50 и LT84 (т. е. время гибели 16, 50 и 84% испытуемых животных).
Величину стандартной ошибки в этом случае определяют либо по графику (функция наклона прямой), либо по формуле:

Слайд 67ХАРАКТЕР ЗАВИСИМОСТИ «КОНЦЕНТРАЦИЯ-ВРЕМЯ» И НЕКОТОРЫЕ КОЛИЧЕСТВЕННЫЕ ВОПРОСЫ ТОКСИКОЛОГИИ РЫБ
Зависимость «концентрации-время» (concentration-action) приобрела

в токсикологии рыб особое значение.
В 1917 г., Е. Пауэре (Powers) в опытах на золотой рыбке установил, что выше определенной области концентраций время выживания испытуемых рыб обратно концентрации и предложил формулу:
 
(С – a) t = K
где
С – концентрация;
а - теоретический порог;
t - время выживания;
К – постоянная
 

Слайд 68При нижних концентрациях, измеряемое время выживания короче, чем это следует из

уравнения, а при высоких больше, чем теоретическая величина.
В графике, где концентрация откладывается по оси абсцисс, а время выживания по оси ординат, то при интерполяции экспериментальных данных кривая приобретает более или менее сигмоидную форму и лишь средняя ее часть будет прямой (рис.). Если продолжить эту прямую до пересечения с осью абсцисс, то точку пересечения условно можно назвать «теоретическим порогом токсичности».

Отношение между временем выживания и концентрацией:
а – теоретический порог токсичности (по Powers, 1917)

Слайд 69При количественной оценке полученных данных авторы в качестве исходной использовали формулу:
 
Cnt

= K,
 
где С - концентрация яда;
t - время гибели;
n и К. - константы.

Полученные экспериментальные данные не совпадали с расчетными, вычисленными по этой формуле, поскольку фенол (равно как и другие яды) имеет пороговую концентрацию, ниже которой токсический эффект не проявляется, и минимальное время отравления даже при больших концентрациях.  

Слайд 70В связи с этим функция Сnt=K представляющая гиперболу с равноугольными асимптотами,

претерпевала некоторые изменения, если учитывалась Cs (пороговая концентрация) и минимальное время токсического эффекта - Ts.
С учетом этих поправок формула приобретала следующий вид:
 
(Тm – Ts) (C – Cs)n = K.
 
При логарифмировании и перестановке получаем
 
lg (Tm – Ts) = K – n lg(C – Cs)
 

Слайд 71.Отношение между временем выживания и концентрацией яда.
По оси абсцисс - концентрация

яда (в мг/л), логарифмическая шкала;
по оси ординат - среднее время выживания рыб, ч;
1- теоретически ожидаемая кривая;
2 - опытная кривая.

Форма кривых «концентрация - время» весьма вариабильна для различных ядов и в известной мере зависит от механизма их действия на организм.
Время выживания рыб в токсических растворах, вероятно, определяется механизмом действия ядов и большим разнообразием других факторов.

Слайд 72Для определения среднего времени выживания использовали не обычную статистическую среднюю, а

среднее геометрическое из периодов выживания при каждой концентрации яда, найденное по формуле   M. S. T. = antilog (lg T / N) ,   где М. S. T. (medial survival time) – среднее время выживания; Т – время выживания каждой рыбы; N - число испытуемых рыб

Слайд 73Рис. Отношение между концентрацией цианидов и временем выживания
радужной форели при

температуре 17,5°С
По оси абсцисс – концентрация CN, мг/л;
по оси ординат – время опрокидывания (логорифмическая шкала)
(по Herbert, Merkens, 1952)
 

Слайд 74В этом случае прямолинейная часть кривой, как и в опытах К.

Вурмана и Х. Вокера (1950), могла быть представлена уравнением
Сnt=K
 
В приведенных работах авторы имели дело с каким-то одним ядом, химическая природа которого известна.
Гораздо сложнее рассчитывать токсичность различных комбинаций ядов, встречающихся в сточных водах.
Д. Олдердайс и Д. Бретт (Alderdice, Brett, 1957) опубликовали результаты своих наблюдений по токсичности отходов целлюлозного производства для молоди лосося и вывели специальный гиперболический эквивалент для прямой линии:

U = a + βV,  
где U – обратная величина средних периодов выживания;
V – обратная величиная концентрации сточного материала.

Слайд 75При нанесении на график логарифмов концентрации моющих средств против логарифмов средних

периодов выживания была получена прямая линия, выраженная уравнением:

lg T = K – n lg C,

где Т – геометрическая средняя периода выживания;
С – концентрация активного материала, мг/л
К = 4,93;
n = 3,71.

К. Карпентер (Carpenter, 1927) выявил отличие кривой, характеризующей форму зависимости времени гибели испытуемых рыб от концентрации ряда тяжелых металлов, при сопоставлении её с кривой Пауэрса. В этих опятах время выживания (t) было свзано с концентрацией (С) уравнением:

(1/t) lg (1/C) = K,

где К – постоянная.


Слайд 76Изучая зависимость токсического эффекта от концентрации яда и времени его действия,

Е. А. Веселов (1965) пришел к выводу, что для расчета токсичности неиспытанных концентраций (по времени гибели) может быть использована формула Габера:

W = Ct,

где W - токсический эффект;
С - концентрация яда;
t - время действия яда.

Слайд 77 Поскольку главной особенностью любой

выборочной совокупности является наличие вариации между ее членами, возникает необходимость измерения степени этой изменчивости. Нередко с этой целью указывают амплитуду ряда распределения - разность между наименьшей и наибольшей величинами, получивших название лимитов ряда. Сопоставление лимитов ряда не полностью характеризует степень изменчивости внутри вариационного ряда. Поэтому для определения характера и степени вариации или рассеивания используют среднее квадратическое (стандартное отклонение)



и дисперсию

где Σх2 - сумма квадратов отдельных измерений;
n - число наблюдений;
М - средняя арифметическая.

Слайд 78 Cреднеквадратическое отклонение (δ) характеризует амплитуду колебаний средней арифметической, представляя абсолютную величину

от средней арифметической. При сопоставлении степени вариации отдельных рядов распределения времени гибели (или другого показателя), измеренных в разных единицах, удобнее использовать коэффициент вариации (υ), показывающий, какую долю средней арифметической составляет среднеквадратическое отклонение. Коэффициент вариации рассчитывается по формуле:

Слайд 79 Критерием точности средней арифметической служит средняя ошибка (mм) средней арифметической представляющая

частное от деления среднего квадратического отклонения от выборочной средней на квадратный корень из числа наблюдений в выборке.

Слайд 80 Существует несколько способов определения достоверности различия. Согласно одному из них различие

считается достоверным, если

Другой спосов основан на использовании так называемого критерия t.

где М1 и М2 – сравнимые средние арифметические; - суммы квадратов отклонений членов вариации ряда от
их средних арифметических; n1 и n2 – количество наблюдений.


 

Слайд 81 Полученную величину t сопоставляют со значением t, которое указано в строке

с определенным количеством животных, вычисленном по формуле
 F = n1 + n2 - 2
по специальной таблице (Weber, 1957)
Если число испытуемых животных в двух сопоставляемых сериях опытов одинаково, т.е.
n1 = n2, величина t может быть установлена по более простой формуле:

Слайд 82В тех случаях, когда характер распределения полученных экспериментальных данных неизвестен, предпочтительнее

использовать в качестве показателя достоверности различия двух рядов распределения непарамётрйчёский критерий Вилкоксона, основанный на числе инверсий. Для каждой пары рядов распределения вычисляют математическое ожидание (М) числа инверсий (u):

где m и n - число наблюдений в каждом ряду, и среднее квадратическое

Приняв уровень значимости критерия q=5%, рассчитывают область больших по абсолютной величине отклонений:

и определяют положение полученного значения числа инверсий относительно этой области.
Важное преимущество непараметрического критерия Вилкоксона состоит в том, что он применим при обработке экспериментальных данных как соответствующих нормальному распределению, так и отклоняющихся от него.

Похожие презентации

Эволюционная теория Дарвина 585
Балық өнімінің құрамы мен қасиеттері. Теңіз өнімдерінің құрамы мен қасиеттері. (Лекция 2) 642
Зат және энергия алмасуы 773
Введение в генетику человека 838
Учение Ч. Дарвина об искусственном отборе 291
Fertilization and development fertilization 305

Обратная связь

Если не удалось найти и скачать презентацию, Вы можете заказать его на нашем сайте. Мы постараемся найти нужный Вам материал и отправим по электронной почте. Не стесняйтесь обращаться к нам, если у вас возникли вопросы или пожелания:

Email: Нажмите что бы посмотреть 

Что такое ThePresentation.ru?

Это сайт презентаций, докладов, проектов, шаблонов в формате PowerPoint. Мы помогаем школьникам, студентам, учителям, преподавателям хранить и обмениваться учебными материалами с другими пользователями.

Для правообладателей

Яндекс.Метрика