Микробиологическое исследование рыбы презентация

проводят при повышенной обсемененности продукции.

разрезе мышечная ткань эластична, плотной консистенции, ямка от надавливания быстро исчезает.

консистенцию, гнилостный запах, распавшиеся внутренние органы, лизированный кишечник.

освобождают от чешуи и прижигают раскаленным скальпелем.
Затем вырезают кусочки мышечной ткани рыбы площадью около 1,5 см2 и толщиной 1,5-2,0 см: один из них берут из поверхностных слоев мышц, расположенных под кожей, другой — из мышечной ткани глубоких слоев, находящихся около позвоночника.
Вырезанным кусочком делают препарат-отпечаток на предметном стекле, препарат фиксируют, окрашивают простым методом и просматривают не менее 10 полей зрения

ткани; при микроскопии препаратов из поверхностных слоев бактерий нет или видны единичные кокки и палочки;
- у рыбы сомнительной свежести в мазках из поверхностных слоев мышц находят 80-60 кокков и палочек; в препаратах из глубоких слоев — 10-20 бактерий в одном поле зрения. На стекле заметны следы распавшейся ткани мышц; препа­рат окрашен удовлетворительно.
В рыбе, непригодной в пищу, в поле зрения как из поверхностных, так и из глубинных слоев, видны сотни палочек.

в количестве не более 3 шт. От каждого экземпляра из несколь­ких мест вырезают кусочки с кожей и мышцами, не затрагивая кишечник (за исключением отбора проб на определение наличия парагемолитических вибрионов), площадью около 4 см2, толщиной 4-5 мм. Эти кусочки помещают во взвешенный стакан; вновь взвешивают и по разности весов устанавливают мас­су отобранной пробы. Пробу измельчают и заливают стериль­ной жидкостью так, чтобы получить конечное разведение 1:10.

стерильного раствора для дальнейшего разведения В результате исследуемый продукт оказывается разведенным в 10, 100 и более раз.
Посев проводят по следующей методике: из двух последних разведений в чашки Петри вносят по 1 мл разведенного материала, заливают 15 мл агара, перемешивают (из каждого разведения делают одновременно посев в 2-3 чашки). После застывания МПА чашки переворачивают вверх дном и помещают в термо­стат при температуре +30°С на 72 ч.

К — количество микроорганизмов в 1 г, КОЕ/г; а — среднее арифметическое число колоний в чашке; b — степень разведе­ния; с — масса, объем, поверхность (г, мл).

г про­дукта и 10 мл исходного разведения продукта помещают во флаконы со 100 и 50 мл питательной среды соответственно.

в пробирку с 6-7 мл среды обогащения (солевого рыбопептонного бульона, содержащего 7% NaCl).
Посевы помещают в термостат при температуре +37°С на 24 ч. Из сред обогащения (солевого, глюкозного бульонов) проводят посев на элективные среды: желточно- или молочно-солевой агар или среду Байрд-Паркер. Посевы выдерживают при температуре +37°С в течение 24 ч.

в соотношении 1:5(1 мл плазмы + 4 мл физраствора), вносят петлю суточной культуры стафилококка. Для контроля одну пробирку с плазмой оставляют незасеянной. Пробирки помещают в термостат при тем­пературе +37°С. Учет реакции плазмокоагуляции проводят че­рез 2, 4 ч. Реакция считается положительной, если сгусток образовался в течение 24 ч.

сальмонелла расти на дифференциально-диагностических сре­дах и давать реакцию агглютинации со специфическими сальмонеллезными сыворотками.
Навесок продукта в количестве 25 г засевают в 100 мл среды обогащения (магниевую или селенитовый бульон). Посевы помещают на 18-20 ч в термостат при температуре +37°С.

жабер.
Для установления наличия парагемолитических вибрионов, пробу в количестве 25 г переносят в 100 мл жидкой среды обогащения.
Посевы помещают в термостат при температуре +37°С, через 24 ч проводят пересев на поверхность плотного ДДА. Чаш­ки инкубируют при температуре +37°С в течение 24 ч, выявля­ют типичные колонии парагемолитических вибрионов.

образую­щие спор, активно подвижные, содержат цитохромоксидазу, не расщепляют лактозу и сахарозу, растут на питательных средах с содержанием хлорида натрия от 3 до 8%,
Для идентификации бактерий делают пересев с ДДА в 1%-ную пептонную воду с 3% хлорида натрия, на которой при наличии парагемолитического вибриона появляется помутне­ние с образованием нежной голубой пленки.
Готовят мазки, окрашивают их по Граму, и изучают морфологию клеток.
Подвижность изучают под фазово-контрастным микроско­пом в раздавленной капле или при посеве в полужидкий МПА. Подвижные формы образуют диффузное помутнение, слабоподвижные - вырастают по ходу укола.