Фотосинтез. Хлорофилл презентация

Содержание

Михаил Семёнович Цвет Создатель хроматографии с трагической судьбой.. Другие каротиноиды Пигменты зелёного листа

Слайд 1Фотосинтез: что делать, когда всё, что можно, уже окислилось?
а/ умереть от

отсутствия энергии
б/ найти способ «регенерации» восстановленных соединений:
СО2 + Н2О → (СН2О) + О2

Для этого необходимо:
1. Найти «псевдонеиссякаемый» источник энергии (вспоминая первую лекцию – безотказного кредитора для безнадежной игры…)
2. Придумать систему трансформации этой энергии в энергию восстановленных соединений.

Псевдонеиссякаемый источник энергии на Земле –
только энергия звезды по имени Солнце…
Таким образом, основные задачи:
поймать энергию солнечных квантов
преобразовать ее в энергию
восстановленных соединений.

Слайд 2Михаил Семёнович
Цвет
Создатель хроматографии
с трагической судьбой..



Другие каротиноиды




Пигменты зелёного листа

Слайд 3Хлорофилл: двуликий Янус Red-Ox реакций
Хлорофилл a
? (фитол)
Хлорофиллов >10:
Chl а, b,

c1, с2, с3, d, f;
BChl a, b, c, d, e, g.
Единственная молекула которая может:
1. Эффективно поглощать hν и трансформировать эту энергию в ē*
2. Обратимо окисляться, т.е. отдавать ē* с последующим заполнением «дырки»
Т.о. иметь два Еo’

Слайд 4Многообразие хлорофиллов



Хлорофиллы (Chl)

Бактериохлорофиллы (BChl)

Водоросли

(+) – у отдельных видов

+ – или

Слайд 5Основные структурные особенности молекулы хлорофилла
Конъюгированная система двойных связей: основная 18-членная π-система

+ дополнителные в I, II, V кольцах.
Mg – минимум «электроотрицательности»; изменяет симметрию молекулы хлорофилла; «активирует» электроны пиррольных азотов;
координационные связи ┴ пл-сти.
V кольцо – «форбиновая структура»: две важных группы:
- карбонильная при С9 (участвует в n → π*
переходах)
- кетоэфирная при С10 – транс- (Chl а)
или цис- (Chl а’) (Р700 = Chl а · Chl а’).
Гидрофобный «хвост» (обычно С20 – фитол). Структурная роль – закрепление молекулы в липофильной области белков.

Chl a

Слайд 6δ-амнолевулиновая кислота – проедшественник гема и хлорофиллов.
Глутаминовая кислота
5-амино-
левулиновая
кислота
Порфобилиноген
(PBG)
Уропорфириноген III
Протопорфирин IX
Гем
Mg-протопорфирин
Хлорофиллид

а

Хлорофилл а

Хлорофилл b

Mg 2+

Mg-хелатаза

Феррохелатаза

Гидроксиметилбилан

hv (!)

Слайд 7
Биосинтез порфиринов у растений происходит в пластидах
цитохромы, каталаза, пероксидазы, леггемоглобин, etc.
фитохромы
(фоторецепторы)
хлорофиллы

Слайд 8Спектры поглощения хлорофиллов
Почему видимый
свет?
1. Оптимум
энергии: 1 – 3 эв.
2.

Максимальная
«прозрачность»
атмосферы для
этих длин волн –
более 50%.

Хлорофиллы имеют два максимума поглощения -
- в красной области спектра (640-700 нм)
- в синей - 400-450 нм.
Каротиноиды поглощают в области 400 - 550 нм

Chlorophyll

Carotenoids

Слайд 9Энергетические уровни хлорофилла
Схема электронных переходов (схема Яблонского) для Mg-порфиринов (упрощённая)

Слайд 10Белковое окружение изменяет спектр поглощения хлорофилла
Спектр поглощения хлоропластов при -196

°С и его разложение на гауссовские полосы (Литвин, 1973): 1 - 9 хлорофиллы: 1 – b648, 2 – a661, 3 – a668, 4 – a675, 5 – a681, 6 – a686, 7 – a693, 8 – a700, 9 – a710; 10 – суммарная экспериментальная кривая; 11 – суммарная теоретическая кривая.

Пигмент-белковые комплексы

Раствор Chl в эфире

Слайд 11Первичные процессы фотосинтеза – временные интервалы различаются на 6 -7 порядков
При

оптимальном освещении разделение зарядов в РЦ происходит 100-200 раз в секунду

Слайд 12Простейшая схема фотосинтеза - пурпурные бактерии (тип II РЦ).
За счет

работы b6c1-комплекса протоны «перекачиваются» через мембрану, и за счет образующегося ΔµН+ синтезируется АТФ.
Но главная задача не решена – нет образования восстановленных соединений.

–

Слайд 13 Вторая простейшая схема фотосинтеза — зелёные серные бактерии (тип I

РЦ).


Восстановленные соединения образуются!

FeS кластеры


(840 нм)

Слайд 14 Основные требования к донору электронов:
Ео’ меньше Ео’ хл+ (т.е. может

отдавать е- на хл+)
Продукты окисления нетоксичны (желательно)
Его должно быть много
Н2S – хорош по всем параметрам, кроме последнего:
1. Ео’н2S = - 0,23 – электрон достаточно легко «забрать»
2. Продукт окисления (сера) - легко уводится из реакции
Н2О – отвратителен по всем параметрам, кроме последнего:
1. Ео’н2о = +0,82 – очень много, электрон «оторвать» трудно
2. Продукт окисления (кислород) - очень токсичен.
Но последний фактор оказался решающим.

Очередная проблема: где взять источник (донор) электронов (окисляемое соединение)?

Слайд 15Как решить проблемы водички в качестве донора электрона? Энергия квантов видимого

света.

400нм (синий свет) — 700нм (красный свет)

λ энергия фотона ΔЕо’ 1 моль фотонов
700нм 0,28 аттодж. 1,77 э-в 1,7 в 171 кдж
640нм 0,31 аттодж. 1,94 э-в 1,9 в 187 кдж
500нм 0,40 аттодж. 2,48 э-в 2,4 в 239 кдж
400нм 0,50 аттодж 3,1 э-в 3,0 в 299 кдж

Энергии кванта света (с учетом затрат на стабилизацию - ~50%) не хватает, чтобы и окислить воду, и восстановить НАДФ+.

Что делать??

Слайд 16Гениальное решение: соединить две фотосистемы! Это произошло ~ 2.5 + 0.3 млрд.

лет назад…

Фотосистема II

Фотосистема I



Слайд 17Z-схема фотосинтеза.
Расположение
кофакторов
И «механический» аналог - для наглядности..
мономерный хла
филохинон (вит.К)

Слайд 18Кофакторы ЭТЦ фотосинтеза: знакомые все лица...
2Fe-2S и 4Fe-4S-белки, хиноны (пластохиноны

и филлохинон), цитохромы


Убихинон (UQ)
(в ЭТЦ митохондрий)

Пластохинон
Plastoquinone (PQ)



Q Q – • QH2
Хинон Семихинон Гидрохинон (= Хинол)

гем a

гем b

гем c

гем в белке

Хиноны

Железо-серные белки

Цитохромы

Филлохинон (в ФС I)


Слайд 19Z-схема: оптимальное сочетание фотосистем позволяет «втиснуть» между ними еще и b6f-комплекс


Фотосистема II

Фотосистема I

цитохромный
b6f-комплекс
↓
Δμ H+
↓
синтез ATP




Слайд 20Z-схема фотосинтеза: RedOx потенциалы компонентов ЭТЦ хлоропластов

Слайд 21Два типа реакционных центров: феофитин-хиноновый и железо-серный
Ну очень положительный потенциал –


- очень опасно, и все из-за водички..


Слайд 22Расположение кофакторов в различных реакционных центрах

Слайд 23Организация фотосинтетического аппарата
Тилакоиды образовались по-видимому, за счет инвагинации внутренней мембраны с

последующим «отшнуровы-ванием».
Таким образом, люмен топологически эквивалентен межмембран-ному пространству.

Слайд 24Организация фотосинтетического аппарата весьма похожа на ЭТЦ дыхания

Слайд 25Организация фотосинтетического аппарата, «реальная картинка».
Строма
Люмен

Слайд 26Фотосистема II: схема реакционного центра (РЦ)
25 белков:

D1 + D2 – Гетеродимер,

на нем:
Р680 – димер Chla, Pheo – феофитин а, ChlZ,D – дополнительные Chl, QA – пластохинон связанный, QB – сайт связывания пластохинона из мембранного пула
F, E – cyt b559
O, P, Q – формируют водоокисляющий
комплекс
C (CP43), B (CP47) – внутренние фокусирующие антенны (13+16 Chla)

…

Слайд 27Фотосистема II Расположение кофакторов.

Слайд 28Фотосистема II. Белки и хлорофиллы..
D1

Слайд 29Фотосистема II в «реальном виде»

Слайд 30Кинетика работы водоокисляющего комплекса


номер вспышки
выделение О2 (отн.ед.)
выделение O2 при освещении вспышками

света


Слайд 31Марганцевый кластер системы фотоокисления воды
Тирозин-161
Гистидин-190
HCO3-?
Одна из схем варианта работы –
состояние

So

Глут. к-та-189

Слайд 32Марганцевый кластер: схема работы, степени окисления атомов

Слайд 33Не все так просто, и не все так ясно в системе

водоокисления…

В организации системы, по-видимому, участвует не только D1 белок, но и D2 и CP43..

W – молекулы воды
Х1 Х21 Х22 –участки связывания молекул воды

Слайд 34В6f-комплекс: схема. Два такта работы Q-цикла. Как и в митохондриях…
PQH2/PQ – восстановленный/окисленный

пластохинон
RFeS – белок Риске (содержит 2Fe2S-кластер)
PC – пластоцианин – Cu-содержащий водорастворимый белок в люмене
bL – низкопотенциальный и bH – высокопотенциальный гемы цитохрома b6


переносчики
1ē

Слайд 35В6f-комплекс (димер) в «реальном виде»
Цитохромы-b6 – фиолетовые ленточки,
Субъединицы IV -

серые,
Белок Риске - оранжевые
Цитохромы f - темно-синие
Малые субъединицы (PetG, PetL, PetM и PetN) - светло-розовые.
Гемы bH, bL f - красные Дополнительный гем - темно-красный.
β - каротин - оранжевый,
Хлорофилл - темно-зеленый (центральный ион магния – желтый шарик),
Железо-серные кластеры -красные и зеленые шарики.
Дополнительные гемы в Q цикле не работают?…

Слайд 36Фотосистема I: схема реакционного центра (РЦ)
ФСI – 13 белков:
А + В

– гетеродимер,
на нем:
Р700, А0, А1, Fx
Белок А гомологичен белкам D1+СP43 ФСII
(Мол. масса белка А соответствует сумме молекулярных масс белков D1 и СP43 из ФСII)
белок В гомологичен белкам D2+CP47 ФСII
С – на нем FA, FB
D, E – связь с Fd
F - связь с PC
FNR – Fd:NADP+-редуктаза (содержит FAD)

Слайд 37Фотосистема I в «реальном виде»
В отличие от бактериального РЦ, в ФСI

высших растений работают обе ветви транспорта электронов (не симметрично)


Слайд 38ЭТЦ хлоропластов: образование NADPH и ATP
Количественное соотношение компонентов в ЭТЦ
Стехиометрия

комплексов изменяется при акклимации к свету

рНout 7.8-8.0

pHin 5.7-6.2

ΔpH 1.8-2.1

Слайд 39Варианты электронного транспорта в ЭТЦ хлоропластов
Варианты транспорта ē:

Продукты:
0 – Нециклический транспорт ē (основной путь) АТР, NADPH
1 – Циклический транспорт ē у фотосистемы I ATP
2 – Псевдоциклический транспорт электронов (р-ция Мелера – сброс ē на О2) ATP
3 – Циклический транспорт ē у фотосистемы II —
4 – Хлоропластное дыхание (= хлородыхание) АТР

1

3

2

4

Слайд 40Варианты электронного транспорта в ЭТЦ хлоропластов: участок с ФСI
1
2
4
Варианты транспорта ē:


1 – Циклический транспорт ē у ФС I
2 – Псевдоциклический транспорт ē (р-ция Мелера – сброс ē на О2)
4 – Хлоропластное дыхание (= хлородыхание)

FQR – Fd:PQ-оксидоредуктаза
SOD – супероксиддисмутаза
POX – пероксидаза
AsA – аскорбат
DHA – дегидроаскорбат
NDH – NAD(P)H-дегидрогеназа
PTOX – пластидная терминальная оксидаза (гомол-на AOX мх)

Слайд 41Циклический поток электронов вокруг фотосистемы II
cytb559 – цитохром b559 – периферические

субъединицы ФСII
ChlZ/D – дополнительные хлорофиллы
β-car – β-каротин

Слайд 42Варианты работы ЭТЦ фотосинтеза: Z-схема
Варианты:

Циклические потоки ē у каждой из фотосистем

Псевдоциклический

транспорт электронов (сброс ē на О2)

Хлоропластное дыхание

Слайд 43Другие варианты использования электронов с ферредоксина
Восстановление азота и серы (минеральное

питание)

Регуляция активности ферментов, в т.ч. ферментов темновой фазы фотосинтеза

Tdx – тиоредоксин

Слайд 44
Антенны: дополнительные пигменты
фикоэритрин
фикоцианин
аллофикоцианин
Chl a
Chl a
Chl b
Спектр солнечного света
лютеин
фикоэритрин
фикоцианин
лютеин
белок
белок

Слайд 45Антенны. Фикобилисомы – светособирающий комплекс цианобактерий и красных водорослей
пигмент

λmax поглощения
PE – фикоэритрины 570 нм
PC – фикоцианины 630 нм
AP – аллофикоцианины 650 нм
Chla 670 нм
Chla хлорофиллы a 678 нм
(Chla)2 680 нм

После поглощения hν РЦ «закрывается на фотохимию» – и надолго. Для эффективной работы РЦ после его «открытия» он должен сразу получить следующий квант. Квантами РЦ снабжают антенны: пигменты, расположенные на специальных белках.


РЦ

Фикобилисома

Стрелки – безизлучательный перенос энергии

Oscillatoria

Porphyra

Слайд 46Фикобилипротеиды. По набору пигментов в антенных комплексах можно заключить, что симбиоз

фототрофов происходил неоднократно..

Цианобактерии
Chla + фикобилисомы + Chlb?
нет CСК

Первые фотосинтезирующие эукариоты

Зелёные водоросли, высшие растения
Chla/b-CСК

Heterokonta = Stramenopiles Chla/c-CСК (фукоксантин)

Красные водоросли Chla-CСК + фикобилисомы

Первичный эндосимбиоз

Вторичные эндосимбиозы

Глаукофиты
Chla-CСК + фикобилисомы

Слайд 47



Антенны. Светособирающие комплексы (ССК) различных организмов
Зелёные серные бактерии
Цианобактерии, Красные водоросли
Пурпурные

бактерии

Зелёные водоросли, Высшие растения

Эффективность передачи энергии с ФБС на Chla РЦ ~95%. ~ 400 фикобилисом на мкм2. До 40% массы белков и до 30% сух.массы клеток приходится на ФБС.

ССК (хлоросомы)
расположены на цитоплазматической стороне мембраны, содержит более 10000 мол-л BChlс (В750) связанного с белками, окружен 1-слой. липидной мембраной.

Антенны пурпурных бактерий встроены в цитоплазматическую мембрану. LH1 кольцом окружает РЦ, содержит каротиноиды и 32 молекулы BChlа. К LH1 у ряда видов присоединены 8-10 LH2 с 27 мол-ми BChlа, расположенными в два слоя.

Антенны высших растений встроены в мембрану тилакоидов.

В основании – белки с BChlа (В790). В мембране – интегральный ССК с BChlа (B804) и РЦ с BChlа (пара P840)

ССК (фикобилисомы)
расположены на цитоплазмати-ческой стороне мембраны тилакоидов.

Т.обр. РЦ обслуживают 250–300 BChlа.

Слайд 48
Каротиноиды: каротины и ксантофиллы – тетратерпены (С40) Различия по концевым группам, содержанию

кислорода, изомерии, числу двойных связей.

Гидроксил придает гидрофильные свойства «концевым» циклам..

каротины: мембрана разрыхляется

ксантофиллы: мембрана жёстче

Слайд 49Развлечения господ инженеров. Генных…
Колонии E.coli, экспрессирующие гены биосинтеза соответствующих каротиноидов




5
7
9
11
11
11

3
λmax, нм


286



347



400



439



472

Слайд 50Схема мономера фотосистемы II с антенными комплексами
СР43, СР47 – внутренние антенны

ФСII
CP24, CP26, CP29 – внешние антенны ФСII
LHCII (ССКII) – светособирающий комплекс II – мобильная антенна (тример)

вид перпендикулярно плоскости мембраны

Слайд 51Расположение хромофоров в фотосистеме II

Вид со стороны стромы
RC:
фиолетовые

–хл-лы розовый – Phe
Антенны:
Хл-лы с 9 по 21 – СР43
Хл-лы с 22 по 37 – СР47
Зеленые и желтый – передают hν на RC, голубые - нет
Красный –
длинноволновый хл-л СР47, связанный
с His-114

Вид сбоку
(строма сверху)

Слайд 52Светособирающий комплекс LHC II (Lhcb 1+2+3): мономер и тример
Каждый белок содержит

8 Chl a, 6 Chl b, 2 лютеина, 1 неоксантин, 1 каротиноид виолоксантинового цикла. Молекулы хлорофилла b находятся на периферии белка, хлорофилла a – в центре белка. Расстояние между хлорофиллами – 0,5–3 нм.


мономер ССКII: вид «сбоку»

тример ССКII: вид «сверху»

Слайд 53Схема мономера и димера фотосистемы II с антенными комплексами
мономер ФСII:
РЦ, внутренние

и внешние антенны

внутренние антенны

внешние антенны

димер ФСII:
РЦ, внутренние, внешние антенны
мобильные антенны (LHCII=ССКII)

мобильная антенна

прочно связанные LHCII

умеренно связанные LHCII

«экстра» (подвижные) LHCII

СР26

СР29

СР24

Слайд 54Структура «суперкомплекса» фотосистем II c ССК, вид со стороны люмена и

«сбоку»

Слайд 55Фотосистема I со своими светособирающими комплексами
Пигменты внутренней антенны (гомологичны СP43 и

CP47 ФСII):
около 95 молекул хлорофилла а и 22 молекулы β-каротина, Располагаются в виде цилиндра, окружающего редокс-агенты электрон-транспортной цепи ФСI.

Внешний светособирающий комплекс ССКI (LHCI)
Cодержит 80 - 120 молекул хлорофиллов а и b, каротиноиды/
Состоит из четырёх субъединиц: Lhca1, Lhca2, Lhca3 и Lhca4 — с молекулярными массами 17 - 24 кДа.

Слайд 56Фотосистема I у цианобактерий существует в виде тримера , у высших

растений – в виде мономера - для работы LHC-II

Цианобактерии

Высшие
растения

Слайд 57Светособирающие комплексы фотосистем I и II
ССКII (тример)
Lhca1-4
«экстра» (подвижные) LHCII

Слайд 58Состав хлорофилл-белковых комплексов ФСI и ФСII
Одна «фотосинтетическая единица» – т.е. одна

ЭТЦ (от ФСII до ФСI) – обслуживается
примерно 500 молекулами пигментов: хлорофиллы a и b, каротиноиды.

Слайд 59 Гетерогенность тилакоидых мембран

Слайд 60Hosta
‘Piedmont Gold’


Hosta sieboldiana
‘Elegans’
Hosta
‘Golden Haze’




Фотовыцветание

Слайд 61Механизмы регулирования и защиты ФСII от фотодеструкции
нециклический поток, регулирование мобильными антеннами;
циклические

потоки вокруг каждой фотосистемы;
псевдоциклический транспорт электронов
Хлоропластное дыхание - ?
виолоксантиновый цикл
«тушение» триплетного состояния хлорофилла каротиноидами
«обезвреживание» активных форм кислорода каротиноидами
каротиноиды «на заклание»
замена D1-белка

Слайд 62Изменение состояний – перемещение ССКII

Р

Р

Р

Р

Р
Состояние 1
Состояние 2
Состояние 1 при низкой освещённости:
ССКII

у ФСII

При повышении освещенности
состояние 1 ? состояние 2:

перевосстановление пула PQ →
активация redox-чувствительной. тилакоидной
протеинкиназы →
фосфорилирование ССКII →
-ССКII отходит от ФСII, граны частично распадаются
-ССКII пристыковывается к ФСI

Состояние 2 при высокой освещённости:
ССКII у ФСI

При снижении освещенности
состояние 2 ? состояние 1:

окисление пула PQ →
деактивация тилакоидной протеинкиназы →
дефосфорилирование (конст. ПФазой) ССКII →
ССКII отходит от ФСI →
ССКII пристыковывается к ФСII →
граны снова слипаются


Р


Р

ФСII CCKII ФСI


поглощ.
света

перенос энергии

Слайд 63Гетерогенная организация тилакиодных структур (смена состояний State1 ↔ State2)
Состояние 1
Состояние 2
подвижные LHCII
PSII
PSII
PSI

минуты

Слайд 64Пластоглобулы – синтетические функции хлоропластов (липиды)

Слайд 65Еще раз: варианты электронного транспорта в ЭТЦ хлоропластов
Варианты транспорта ē:

Продукты:
0 – Нециклический транспорт ē (основной путь) АТР, NADPH
1 – Циклический транспорт ē у фотосистемы I ATP
2 – Псевдоциклический транспорт электронов (р-ция Мелера – сброс ē на О2) ATP
3 – Циклический транспорт ē у фотосистемы II —
4 – Хлоропластное дыхание (= хлородыхание) АТР

1

3

2

4

Слайд 66Варианты работы ЭТЦ фотосинтеза изменяются в зависимости от внешних условий
Варианты:

Циклические

потоки ē у каждой из фотосистем

Псевдоциклический транспорт электронов (сброс ē на О2)

Хлоропластное дыхание

Слайд 67Функции каротиноидов
1. Антенны (400 – 500 нм)
2. Структурная (организация ССК)
3. Фотопротекторная

(виолаксантиновый цикл)
4. Защита от УФ и высоких интенсивностей света
a)



PРЦ 1Р* 3Р*
3car 1car P




3O2


1O2

3car

1car


β-каротин

b)


(«жертвенная»)

car

P+680

car+

P680



Х

hν

PH•

car •

car

R•

RН





Х


тепло


тепло




car

car*




тепло


Слайд 68Каротиноиды в хлоропластах
1. Разные состояния: мономерная или агрегированная форма, связь с

белками.
2. Изомеры: транс – в антеннах, цис – в РЦ. При этом в РЦ – β-каротины, в ССК – ксантофиллы.
Ядро ФС I высших растений содержит 24 молекул β-каротина (2 в РЦ, 22 – во внутренней антенне. из них 5 – в цис-конформации).
Ядро ФС II: на D1 и D2 белках расположены симметрично 2 молекулы β-каротина. На D1 – все-транс форма, на D2 – 15-цис форма. Внутренняя антенна (СР43 и СР47) – 2-3 молекулы β-каротина и несколько молекул лютеина. ССК (СР24, СР26, СР29) – в каждом 1 -2 молекулы лютеина, а также молекулы неоксантина, зеаксантина, антероксантина и виолоксантина.

Антенная функция – все-транс форма.
Защитные функции - все-транс форма β-каротина на D1 белке – альтернативный донор е- для Р680 при низких tо и нарушении работы OEC.
15-цис форма на D2 – тушение триплета Р680 за счет изомеризации во все-транс-форму.

Слайд 69
Виолоксантиновый цикл – основа «нефотохимического тушения»
Энергия S1 ниже
S1 хлорофилла
Энергия S1

выше
S1 хлорофилла

Viol

Chl

Zea

S0

S1*

эпоксидаза

эпоксидаза

деэпоксидаза

деэпоксидаза


зеаксантин


виолаксантин


антераксантин

люмен мембрана тилакоида строма







тепло

hv

AscH– – аскорбат
DHA - дегидроаскорбат

pHopt 7,6

pHopt 5,0

S2*

Слайд 70Фотозащита. «Переключение» виолоксантиновой системы.
Виолоксантин-деэпоксидаза, 43 kDa, тример, рН 7 – неактивна,

рН 5 – активна. Т.к. она находится со стороны люмена, то может «обслуживать» только одно кольцо виолаксантина. Для изменения двух сторон каротиноидов нужен их поворот – флип-флоп, что редко. Этому способствует MGDG – моногалактозил-диглицериды. При повышении их доли в мембране с 5% до 30% реакция эпоксидации увеличивается с 0 о 100%. Они формируют гексагональные кластеры в мембране.

V - виолоксантин
Z - зеаксантин

Слайд 71D1 белок – «камикадзе» растительной клетки
Разборка ФС II: уходят белки OEC,

снимаются атомы Mn, отсоединяются CP43, CP47
Удаление «испорченного» белка: «отгрызаются» выступающие из мембраны участки D1 белка (работает специальная протеаза degP2), специальный белок «выталкивает» его останки из мембраны
Синтез нового D1 белка: синтез идет в ламеллах, процессинг (удаляется N-концевой метионин, оставшийся треонин ацетилируется, этот треонин может обратимо фосфориллироваться).
Миграция D1 белка в граны: белок пальмитинируется и в таком виде мигрирует в граны.
Обратная сборка ФС II

Интенсивность синтеза D1 белка – 50% от всех синтезируемых
в хлоропласте белков, тогда как его доля – 0,1% от белков хлоропласта

Время «полужизни» D1 белка на ярком свету – 30 минут

Слайд 72Темновая фаза фотосинтеза – образование «основных фондов» из НАДФН и АТФ

Слайд 73Восстановительный пентозо-фосфатный цикл (ВПЦ)

Похожие презентации

Домашние питомцы коты 240
Анатомо-физиологические особенности пищеварения 761
Первичная продукция водоемов: моделирование и прогноз 280
Закономерности наследования признаков при половом размножении 303
ЖИВОТНЫЕ НА ВОЙНЕ 258
Астробиология, космическая биология и медицина 363

Обратная связь

Если не удалось найти и скачать презентацию, Вы можете заказать его на нашем сайте. Мы постараемся найти нужный Вам материал и отправим по электронной почте. Не стесняйтесь обращаться к нам, если у вас возникли вопросы или пожелания:

Email: Нажмите что бы посмотреть 

Что такое ThePresentation.ru?

Это сайт презентаций, докладов, проектов, шаблонов в формате PowerPoint. Мы помогаем школьникам, студентам, учителям, преподавателям хранить и обмениваться учебными материалами с другими пользователями.

Для правообладателей

Яндекс.Метрика