Фотосинтез. Хлорофилл презентация

Содержание

Михаил Семёнович Цвет Создатель хроматографии с трагической судьбой.. Другие каротиноиды Пигменты зелёного листа

Слайд 1Фотосинтез: что делать, когда всё, что можно, уже окислилось?
а/ умереть от

отсутствия энергии
б/ найти способ «регенерации» восстановленных соединений:
СО2 + Н2О → (СН2О) + О2

Для этого необходимо:
1. Найти «псевдонеиссякаемый» источник энергии (вспоминая первую лекцию – безотказного кредитора для безнадежной игры…)
2. Придумать систему трансформации этой энергии в энергию восстановленных соединений.

Псевдонеиссякаемый источник энергии на Земле –
только энергия звезды по имени Солнце…
Таким образом, основные задачи:
поймать энергию солнечных квантов
преобразовать ее в энергию
восстановленных соединений.

Слайд 2Михаил Семёнович
Цвет
Создатель хроматографии
с трагической судьбой..



Другие каротиноиды




Пигменты зелёного листа

Слайд 3Хлорофилл: двуликий Янус Red-Ox реакций
Хлорофилл a
? (фитол)
Хлорофиллов >10:
Chl а, b,

c1, с2, с3, d, f;
BChl a, b, c, d, e, g.
Единственная молекула которая может:
1. Эффективно поглощать hν и трансформировать эту энергию в ē*
2. Обратимо окисляться, т.е. отдавать ē* с последующим заполнением «дырки»
Т.о. иметь два Еo’

Слайд 4Многообразие хлорофиллов



Хлорофиллы (Chl)

Бактериохлорофиллы (BChl)

Водоросли

(+) – у отдельных видов

+ – или

Слайд 5Основные структурные особенности молекулы хлорофилла
Конъюгированная система двойных связей: основная 18-членная π-система

+ дополнителные в I, II, V кольцах.
Mg – минимум «электроотрицательности»; изменяет симметрию молекулы хлорофилла; «активирует» электроны пиррольных азотов;
координационные связи ┴ пл-сти.
V кольцо – «форбиновая структура»: две важных группы:
- карбонильная при С9 (участвует в n → π*
переходах)
- кетоэфирная при С10 – транс- (Chl а)
или цис- (Chl а’) (Р700 = Chl а · Chl а’).
Гидрофобный «хвост» (обычно С20 – фитол). Структурная роль – закрепление молекулы в липофильной области белков.

Chl a

Слайд 6δ-амнолевулиновая кислота – проедшественник гема и хлорофиллов.
Глутаминовая кислота
5-амино-
левулиновая
кислота
Порфобилиноген
(PBG)
Уропорфириноген III
Протопорфирин IX
Гем
Mg-протопорфирин
Хлорофиллид

а

Хлорофилл а

Хлорофилл b

Mg 2+

Mg-хелатаза

Феррохелатаза

Гидроксиметилбилан

hv (!)

Слайд 7
Биосинтез порфиринов у растений происходит в пластидах
цитохромы, каталаза, пероксидазы, леггемоглобин, etc.
фитохромы
(фоторецепторы)
хлорофиллы

Слайд 8Спектры поглощения хлорофиллов
Почему видимый
свет?
1. Оптимум
энергии: 1 – 3 эв.
2.

Максимальная
«прозрачность»
атмосферы для
этих длин волн –
более 50%.

Хлорофиллы имеют два максимума поглощения -
- в красной области спектра (640-700 нм)
- в синей - 400-450 нм.
Каротиноиды поглощают в области 400 - 550 нм

Chlorophyll

Carotenoids

Слайд 9Энергетические уровни хлорофилла
Схема электронных переходов (схема Яблонского) для Mg-порфиринов (упрощённая)

Слайд 10Белковое окружение изменяет спектр поглощения хлорофилла
Спектр поглощения хлоропластов при -196

°С и его разложение на гауссовские полосы (Литвин, 1973): 1 - 9 хлорофиллы: 1 – b648, 2 – a661, 3 – a668, 4 – a675, 5 – a681, 6 – a686, 7 – a693, 8 – a700, 9 – a710; 10 – суммарная экспериментальная кривая; 11 – суммарная теоретическая кривая.

Пигмент-белковые комплексы

Раствор Chl в эфире

Слайд 11Первичные процессы фотосинтеза – временные интервалы различаются на 6 -7 порядков
При

оптимальном освещении разделение зарядов в РЦ происходит 100-200 раз в секунду

Слайд 12Простейшая схема фотосинтеза - пурпурные бактерии (тип II РЦ).
За счет

работы b6c1-комплекса протоны «перекачиваются» через мембрану, и за счет образующегося ΔµН+ синтезируется АТФ.
Но главная задача не решена – нет образования восстановленных соединений.

–

Слайд 13 Вторая простейшая схема фотосинтеза — зелёные серные бактерии (тип I

РЦ).


Восстановленные соединения образуются!

FeS кластеры


(840 нм)

Слайд 14 Основные требования к донору электронов:
Ео’ меньше Ео’ хл+ (т.е. может

отдавать е- на хл+)
Продукты окисления нетоксичны (желательно)
Его должно быть много
Н2S – хорош по всем параметрам, кроме последнего:
1. Ео’н2S = - 0,23 – электрон достаточно легко «забрать»
2. Продукт окисления (сера) - легко уводится из реакции
Н2О – отвратителен по всем параметрам, кроме последнего:
1. Ео’н2о = +0,82 – очень много, электрон «оторвать» трудно
2. Продукт окисления (кислород) - очень токсичен.
Но последний фактор оказался решающим.

Очередная проблема: где взять источник (донор) электронов (окисляемое соединение)?

Слайд 15Как решить проблемы водички в качестве донора электрона? Энергия квантов видимого

света.

400нм (синий свет) — 700нм (красный свет)

λ энергия фотона ΔЕо’ 1 моль фотонов
700нм 0,28 аттодж. 1,77 э-в 1,7 в 171 кдж
640нм 0,31 аттодж. 1,94 э-в 1,9 в 187 кдж
500нм 0,40 аттодж. 2,48 э-в 2,4 в 239 кдж
400нм 0,50 аттодж 3,1 э-в 3,0 в 299 кдж

Энергии кванта света (с учетом затрат на стабилизацию - ~50%) не хватает, чтобы и окислить воду, и восстановить НАДФ+.

Что делать??

Слайд 16Гениальное решение: соединить две фотосистемы! Это произошло ~ 2.5 + 0.3 млрд.

лет назад…

Фотосистема II

Фотосистема I



Слайд 17Z-схема фотосинтеза.
Расположение
кофакторов
И «механический» аналог - для наглядности..
мономерный хла
филохинон (вит.К)

Слайд 18Кофакторы ЭТЦ фотосинтеза: знакомые все лица...
2Fe-2S и 4Fe-4S-белки, хиноны (пластохиноны

и филлохинон), цитохромы


Убихинон (UQ)
(в ЭТЦ митохондрий)

Пластохинон
Plastoquinone (PQ)



Q Q – • QH2
Хинон Семихинон Гидрохинон (= Хинол)

гем a

гем b

гем c

гем в белке

Хиноны

Железо-серные белки

Цитохромы

Филлохинон (в ФС I)


Слайд 19Z-схема: оптимальное сочетание фотосистем позволяет «втиснуть» между ними еще и b6f-комплекс


Фотосистема II

Фотосистема I

цитохромный
b6f-комплекс
↓
Δμ H+
↓
синтез ATP




Слайд 20Z-схема фотосинтеза: RedOx потенциалы компонентов ЭТЦ хлоропластов

Слайд 21Два типа реакционных центров: феофитин-хиноновый и железо-серный
Ну очень положительный потенциал –


- очень опасно, и все из-за водички..


Слайд 22Расположение кофакторов в различных реакционных центрах

Слайд 23Организация фотосинтетического аппарата
Тилакоиды образовались по-видимому, за счет инвагинации внутренней мембраны с

последующим «отшнуровы-ванием».
Таким образом, люмен топологически эквивалентен межмембран-ному пространству.

Слайд 24Организация фотосинтетического аппарата весьма похожа на ЭТЦ дыхания

Слайд 25Организация фотосинтетического аппарата, «реальная картинка».
Строма
Люмен

Слайд 26Фотосистема II: схема реакционного центра (РЦ)
25 белков:

D1 + D2 – Гетеродимер,

на нем:
Р680 – димер Chla, Pheo – феофитин а, ChlZ,D – дополнительные Chl, QA – пластохинон связанный, QB – сайт связывания пластохинона из мембранного пула
F, E – cyt b559
O, P, Q – формируют водоокисляющий
комплекс
C (CP43), B (CP47) – внутренние фокусирующие антенны (13+16 Chla)

…

Слайд 27Фотосистема II Расположение кофакторов.

Слайд 28Фотосистема II. Белки и хлорофиллы..
D1

Слайд 29Фотосистема II в «реальном виде»

Слайд 30Кинетика работы водоокисляющего комплекса


номер вспышки
выделение О2 (отн.ед.)
выделение O2 при освещении вспышками

света


Слайд 31Марганцевый кластер системы фотоокисления воды
Тирозин-161
Гистидин-190
HCO3-?
Одна из схем варианта работы –
состояние

So

Глут. к-та-189

Слайд 32Марганцевый кластер: схема работы, степени окисления атомов

Слайд 33Не все так просто, и не все так ясно в системе

водоокисления…

В организации системы, по-видимому, участвует не только D1 белок, но и D2 и CP43..

W – молекулы воды
Х1 Х21 Х22 –участки связывания молекул воды

Слайд 34В6f-комплекс: схема. Два такта работы Q-цикла. Как и в митохондриях…
PQH2/PQ – восстановленный/окисленный

пластохинон
RFeS – белок Риске (содержит 2Fe2S-кластер)
PC – пластоцианин – Cu-содержащий водорастворимый белок в люмене
bL – низкопотенциальный и bH – высокопотенциальный гемы цитохрома b6


переносчики
1ē

Слайд 35В6f-комплекс (димер) в «реальном виде»
Цитохромы-b6 – фиолетовые ленточки,
Субъединицы IV -

серые,
Белок Риске - оранжевые
Цитохромы f - темно-синие
Малые субъединицы (PetG, PetL, PetM и PetN) - светло-розовые.
Гемы bH, bL f - красные Дополнительный гем - темно-красный.
β - каротин - оранжевый,
Хлорофилл - темно-зеленый (центральный ион магния – желтый шарик),
Железо-серные кластеры -красные и зеленые шарики.
Дополнительные гемы в Q цикле не работают?…

Слайд 36Фотосистема I: схема реакционного центра (РЦ)
ФСI – 13 белков:
А + В

– гетеродимер,
на нем:
Р700, А0, А1, Fx
Белок А гомологичен белкам D1+СP43 ФСII
(Мол. масса белка А соответствует сумме молекулярных масс белков D1 и СP43 из ФСII)
белок В гомологичен белкам D2+CP47 ФСII
С – на нем FA, FB
D, E – связь с Fd
F - связь с PC
FNR – Fd:NADP+-редуктаза (содержит FAD)

Слайд 37Фотосистема I в «реальном виде»
В отличие от бактериального РЦ, в ФСI

высших растений работают обе ветви транспорта электронов (не симметрично)


Слайд 38ЭТЦ хлоропластов: образование NADPH и ATP
Количественное соотношение компонентов в ЭТЦ
Стехиометрия

комплексов изменяется при акклимации к свету

рНout 7.8-8.0

pHin 5.7-6.2

ΔpH 1.8-2.1

Слайд 39Варианты электронного транспорта в ЭТЦ хлоропластов
Варианты транспорта ē:

Продукты:
0 – Нециклический транспорт ē (основной путь) АТР, NADPH
1 – Циклический транспорт ē у фотосистемы I ATP
2 – Псевдоциклический транспорт электронов (р-ция Мелера – сброс ē на О2) ATP
3 – Циклический транспорт ē у фотосистемы II —
4 – Хлоропластное дыхание (= хлородыхание) АТР

1

3

2

4

Слайд 40Варианты электронного транспорта в ЭТЦ хлоропластов: участок с ФСI
1
2
4
Варианты транспорта ē:


1 – Циклический транспорт ē у ФС I
2 – Псевдоциклический транспорт ē (р-ция Мелера – сброс ē на О2)
4 – Хлоропластное дыхание (= хлородыхание)

FQR – Fd:PQ-оксидоредуктаза
SOD – супероксиддисмутаза
POX – пероксидаза
AsA – аскорбат
DHA – дегидроаскорбат
NDH – NAD(P)H-дегидрогеназа
PTOX – пластидная терминальная оксидаза (гомол-на AOX мх)

Слайд 41Циклический поток электронов вокруг фотосистемы II
cytb559 – цитохром b559 – периферические

субъединицы ФСII
ChlZ/D – дополнительные хлорофиллы
β-car – β-каротин

Слайд 42Варианты работы ЭТЦ фотосинтеза: Z-схема
Варианты:

Циклические потоки ē у каждой из фотосистем

Псевдоциклический

транспорт электронов (сброс ē на О2)

Хлоропластное дыхание

Слайд 43Другие варианты использования электронов с ферредоксина
Восстановление азота и серы (минеральное

питание)

Регуляция активности ферментов, в т.ч. ферментов темновой фазы фотосинтеза

Tdx – тиоредоксин

Слайд 44
Антенны: дополнительные пигменты
фикоэритрин
фикоцианин
аллофикоцианин
Chl a
Chl a
Chl b
Спектр солнечного света
лютеин
фикоэритрин
фикоцианин
лютеин
белок
белок

Слайд 45Антенны. Фикобилисомы – светособирающий комплекс цианобактерий и красных водорослей
пигмент

λmax поглощения
PE – фикоэритрины 570 нм
PC – фикоцианины 630 нм
AP – аллофикоцианины 650 нм
Chla 670 нм
Chla хлорофиллы a 678 нм
(Chla)2 680 нм

После поглощения hν РЦ «закрывается на фотохимию» – и надолго. Для эффективной работы РЦ после его «открытия» он должен сразу получить следующий квант. Квантами РЦ снабжают антенны: пигменты, расположенные на специальных белках.


РЦ

Фикобилисома

Стрелки – безизлучательный перенос энергии

Oscillatoria

Porphyra

Слайд 46Фикобилипротеиды. По набору пигментов в антенных комплексах можно заключить, что симбиоз

фототрофов происходил неоднократно..

Цианобактерии
Chla + фикобилисомы + Chlb?
нет CСК

Первые фотосинтезирующие эукариоты

Зелёные водоросли, высшие растения
Chla/b-CСК

Heterokonta = Stramenopiles Chla/c-CСК (фукоксантин)

Красные водоросли Chla-CСК + фикобилисомы

Первичный эндосимбиоз

Вторичные эндосимбиозы

Глаукофиты
Chla-CСК + фикобилисомы

Слайд 47



Антенны. Светособирающие комплексы (ССК) различных организмов
Зелёные серные бактерии
Цианобактерии, Красные водоросли
Пурпурные

бактерии

Зелёные водоросли, Высшие растения

Эффективность передачи энергии с ФБС на Chla РЦ ~95%. ~ 400 фикобилисом на мкм2. До 40% массы белков и до 30% сух.массы клеток приходится на ФБС.

ССК (хлоросомы)
расположены на цитоплазматической стороне мембраны, содержит более 10000 мол-л BChlс (В750) связанного с белками, окружен 1-слой. липидной мембраной.

Антенны пурпурных бактерий встроены в цитоплазматическую мембрану. LH1 кольцом окружает РЦ, содержит каротиноиды и 32 молекулы BChlа. К LH1 у ряда видов присоединены 8-10 LH2 с 27 мол-ми BChlа, расположенными в два слоя.

Антенны высших растений встроены в мембрану тилакоидов.

В основании – белки с BChlа (В790). В мембране – интегральный ССК с BChlа (B804) и РЦ с BChlа (пара P840)

ССК (фикобилисомы)
расположены на цитоплазмати-ческой стороне мембраны тилакоидов.

Т.обр. РЦ обслуживают 250–300 BChlа.

Слайд 48
Каротиноиды: каротины и ксантофиллы – тетратерпены (С40) Различия по концевым группам, содержанию

кислорода, изомерии, числу двойных связей.

Гидроксил придает гидрофильные свойства «концевым» циклам..

каротины: мембрана разрыхляется

ксантофиллы: мембрана жёстче

Слайд 49Развлечения господ инженеров. Генных…
Колонии E.coli, экспрессирующие гены биосинтеза соответствующих каротиноидов




5
7
9
11
11
11

3
λmax, нм


286



347



400



439



472

Слайд 50Схема мономера фотосистемы II с антенными комплексами
СР43, СР47 – внутренние антенны

ФСII
CP24, CP26, CP29 – внешние антенны ФСII
LHCII (ССКII) – светособирающий комплекс II – мобильная антенна (тример)

вид перпендикулярно плоскости мембраны

Слайд 51Расположение хромофоров в фотосистеме II

Вид со стороны стромы
RC:
фиолетовые

–хл-лы розовый – Phe
Антенны:
Хл-лы с 9 по 21 – СР43
Хл-лы с 22 по 37 – СР47
Зеленые и желтый – передают hν на RC, голубые - нет
Красный –
длинноволновый хл-л СР47, связанный
с His-114

Вид сбоку
(строма сверху)

Слайд 52Светособирающий комплекс LHC II (Lhcb 1+2+3): мономер и тример
Каждый белок содержит

8 Chl a, 6 Chl b, 2 лютеина, 1 неоксантин, 1 каротиноид виолоксантинового цикла. Молекулы хлорофилла b находятся на периферии белка, хлорофилла a – в центре белка. Расстояние между хлорофиллами – 0,5–3 нм.


мономер ССКII: вид «сбоку»

тример ССКII: вид «сверху»

Слайд 53Схема мономера и димера фотосистемы II с антенными комплексами
мономер ФСII:
РЦ, внутренние

и внешние антенны

внутренние антенны

внешние антенны

димер ФСII:
РЦ, внутренние, внешние антенны
мобильные антенны (LHCII=ССКII)

мобильная антенна

прочно связанные LHCII

умеренно связанные LHCII

«экстра» (подвижные) LHCII

СР26

СР29

СР24

Слайд 54Структура «суперкомплекса» фотосистем II c ССК, вид со стороны люмена и

«сбоку»

Слайд 55Фотосистема I со своими светособирающими комплексами
Пигменты внутренней антенны (гомологичны СP43 и

CP47 ФСII):
около 95 молекул хлорофилла а и 22 молекулы β-каротина, Располагаются в виде цилиндра, окружающего редокс-агенты электрон-транспортной цепи ФСI.

Внешний светособирающий комплекс ССКI (LHCI)
Cодержит 80 - 120 молекул хлорофиллов а и b, каротиноиды/
Состоит из четырёх субъединиц: Lhca1, Lhca2, Lhca3 и Lhca4 — с молекулярными массами 17 - 24 кДа.

Слайд 56Фотосистема I у цианобактерий существует в виде тримера , у высших

растений – в виде мономера - для работы LHC-II

Цианобактерии

Высшие
растения

Слайд 57Светособирающие комплексы фотосистем I и II
ССКII (тример)
Lhca1-4
«экстра» (подвижные) LHCII

Слайд 58Состав хлорофилл-белковых комплексов ФСI и ФСII
Одна «фотосинтетическая единица» – т.е. одна

ЭТЦ (от ФСII до ФСI) – обслуживается
примерно 500 молекулами пигментов: хлорофиллы a и b, каротиноиды.

Слайд 59 Гетерогенность тилакоидых мембран

Слайд 60Hosta
‘Piedmont Gold’


Hosta sieboldiana
‘Elegans’
Hosta
‘Golden Haze’




Фотовыцветание

Слайд 61Механизмы регулирования и защиты ФСII от фотодеструкции
нециклический поток, регулирование мобильными антеннами;
циклические

потоки вокруг каждой фотосистемы;
псевдоциклический транспорт электронов
Хлоропластное дыхание - ?
виолоксантиновый цикл
«тушение» триплетного состояния хлорофилла каротиноидами
«обезвреживание» активных форм кислорода каротиноидами
каротиноиды «на заклание»
замена D1-белка

Слайд 62Изменение состояний – перемещение ССКII

Р

Р

Р

Р

Р
Состояние 1
Состояние 2
Состояние 1 при низкой освещённости:
ССКII

у ФСII

При повышении освещенности
состояние 1 ? состояние 2:

перевосстановление пула PQ →
активация redox-чувствительной. тилакоидной
протеинкиназы →
фосфорилирование ССКII →
-ССКII отходит от ФСII, граны частично распадаются
-ССКII пристыковывается к ФСI

Состояние 2 при высокой освещённости:
ССКII у ФСI

При снижении освещенности
состояние 2 ? состояние 1:

окисление пула PQ →
деактивация тилакоидной протеинкиназы →
дефосфорилирование (конст. ПФазой) ССКII →
ССКII отходит от ФСI →
ССКII пристыковывается к ФСII →
граны снова слипаются


Р


Р

ФСII CCKII ФСI


поглощ.
света

перенос энергии

Слайд 63Гетерогенная организация тилакиодных структур (смена состояний State1 ↔ State2)
Состояние 1
Состояние 2
подвижные LHCII
PSII
PSII
PSI

минуты

Слайд 64Пластоглобулы – синтетические функции хлоропластов (липиды)

Слайд 65Еще раз: варианты электронного транспорта в ЭТЦ хлоропластов
Варианты транспорта ē:

Продукты:
0 – Нециклический транспорт ē (основной путь) АТР, NADPH
1 – Циклический транспорт ē у фотосистемы I ATP
2 – Псевдоциклический транспорт электронов (р-ция Мелера – сброс ē на О2) ATP
3 – Циклический транспорт ē у фотосистемы II —
4 – Хлоропластное дыхание (= хлородыхание) АТР

1

3

2

4

Слайд 66Варианты работы ЭТЦ фотосинтеза изменяются в зависимости от внешних условий
Варианты:

Циклические

потоки ē у каждой из фотосистем

Псевдоциклический транспорт электронов (сброс ē на О2)

Хлоропластное дыхание

Слайд 67Функции каротиноидов
1. Антенны (400 – 500 нм)
2. Структурная (организация ССК)
3. Фотопротекторная

(виолаксантиновый цикл)
4. Защита от УФ и высоких интенсивностей света
a)



PРЦ 1Р* 3Р*
3car 1car P




3O2


1O2

3car

1car


β-каротин

b)


(«жертвенная»)

car

P+680

car+

P680



Х

hν

PH•

car •

car

R•

RН





Х


тепло


тепло




car

car*




тепло


Слайд 68Каротиноиды в хлоропластах
1. Разные состояния: мономерная или агрегированная форма, связь с

белками.
2. Изомеры: транс – в антеннах, цис – в РЦ. При этом в РЦ – β-каротины, в ССК – ксантофиллы.
Ядро ФС I высших растений содержит 24 молекул β-каротина (2 в РЦ, 22 – во внутренней антенне. из них 5 – в цис-конформации).
Ядро ФС II: на D1 и D2 белках расположены симметрично 2 молекулы β-каротина. На D1 – все-транс форма, на D2 – 15-цис форма. Внутренняя антенна (СР43 и СР47) – 2-3 молекулы β-каротина и несколько молекул лютеина. ССК (СР24, СР26, СР29) – в каждом 1 -2 молекулы лютеина, а также молекулы неоксантина, зеаксантина, антероксантина и виолоксантина.

Антенная функция – все-транс форма.
Защитные функции - все-транс форма β-каротина на D1 белке – альтернативный донор е- для Р680 при низких tо и нарушении работы OEC.
15-цис форма на D2 – тушение триплета Р680 за счет изомеризации во все-транс-форму.

Слайд 69
Виолоксантиновый цикл – основа «нефотохимического тушения»
Энергия S1 ниже
S1 хлорофилла
Энергия S1

выше
S1 хлорофилла

Viol

Chl

Zea

S0

S1*

эпоксидаза

эпоксидаза

деэпоксидаза

деэпоксидаза


зеаксантин


виолаксантин


антераксантин

люмен мембрана тилакоида строма







тепло

hv

AscH– – аскорбат
DHA - дегидроаскорбат

pHopt 7,6

pHopt 5,0

S2*

Слайд 70Фотозащита. «Переключение» виолоксантиновой системы.
Виолоксантин-деэпоксидаза, 43 kDa, тример, рН 7 – неактивна,

рН 5 – активна. Т.к. она находится со стороны люмена, то может «обслуживать» только одно кольцо виолаксантина. Для изменения двух сторон каротиноидов нужен их поворот – флип-флоп, что редко. Этому способствует MGDG – моногалактозил-диглицериды. При повышении их доли в мембране с 5% до 30% реакция эпоксидации увеличивается с 0 о 100%. Они формируют гексагональные кластеры в мембране.

V - виолоксантин
Z - зеаксантин

Слайд 71D1 белок – «камикадзе» растительной клетки
Разборка ФС II: уходят белки OEC,

снимаются атомы Mn, отсоединяются CP43, CP47
Удаление «испорченного» белка: «отгрызаются» выступающие из мембраны участки D1 белка (работает специальная протеаза degP2), специальный белок «выталкивает» его останки из мембраны
Синтез нового D1 белка: синтез идет в ламеллах, процессинг (удаляется N-концевой метионин, оставшийся треонин ацетилируется, этот треонин может обратимо фосфориллироваться).
Миграция D1 белка в граны: белок пальмитинируется и в таком виде мигрирует в граны.
Обратная сборка ФС II

Интенсивность синтеза D1 белка – 50% от всех синтезируемых
в хлоропласте белков, тогда как его доля – 0,1% от белков хлоропласта

Время «полужизни» D1 белка на ярком свету – 30 минут

Слайд 72Темновая фаза фотосинтеза – образование «основных фондов» из НАДФН и АТФ

Слайд 73Восстановительный пентозо-фосфатный цикл (ВПЦ)

Похожие презентации

Микроскопические методы исследования. Физиология микроорганизмов 673
Физиология пищеварения 259
Морфофункциональные преобразования в филогенезе систем органов позвоночных 600
Гемофильді таяқша. Морфологиялық және биохимиялық нышандары. Науқас ағзасында орналасуы. Адам патологиясында атқаратын рөлі 599
Цитоплазма. Одномембранные органоиды 377
Биотехнология туралы түсінік 1565

Обратная связь

Если не удалось найти и скачать презентацию, Вы можете заказать его на нашем сайте. Мы постараемся найти нужный Вам материал и отправим по электронной почте. Не стесняйтесь обращаться к нам, если у вас возникли вопросы или пожелания:

Email: Нажмите что бы посмотреть 

Что такое ThePresentation.ru?

Это сайт презентаций, докладов, проектов, шаблонов в формате PowerPoint. Мы помогаем школьникам, студентам, учителям, преподавателям хранить и обмениваться учебными материалами с другими пользователями.

Для правообладателей

Яндекс.Метрика